轉染時間對奶牛子宮內膜原代上皮細胞轉染的影響:在奶牛子宮內膜原代上皮細胞中,應用帶有FAM標記的miRNA-185mimics為報告基因,檢測兩種不同轉染試劑(LipofectamineRNAiMAX與Lipofectamine2000)在細胞接種不同時間后的轉染效率33。結果顯示,無論使用哪種轉染試劑,12h的轉染效率均極***高于18、24h,LipofectamineRNAiMAX各時間點的轉染效率均極***高于Lipofectamine2000。并且,使用LipofectamineRNAiMAX作為轉染試劑時,12h的熒光強度也比較高。這說明在奶牛子宮內膜原代上皮細胞中,選擇合適的轉染試劑和轉染時間可以提高轉染效率。同時,該研究未明確轉染對細胞死亡的影響,但可以進一步研究不同轉染條件下細胞的存活率,以確定在提高轉染效率的同時降低細胞死亡的比較好條件。提高 RNA 轉染試劑的轉染效率同時降低細胞死亡。中國澳門鄭州轉染試劑
考慮實驗目的和應用場景不同的實驗目的和應用場景可能需要不同類型的轉染試劑。***應用:如果轉染試劑用于基因***或藥物研發等應用,那么需要選擇具有良好生物相容性和安全性的試劑。在安全有效的遞送mRNA使用改性PEI基脂質聚合物的研究中,探索了All-Fect和Leu-FectC作為新型轉染試劑,這些試劑具有優異的生物相容性、高效的遞送能力和強大的溶酶體逃逸能力,可直接增加mRNA穩定性并促進高效基因翻譯,適用于基因***等應用4。基礎研究:對于基礎研究實驗,可能更注重轉染效率和實驗的可重復性。在不同轉染方式用于modRNA轉染人脂肪干細胞的初步研究中,比較了不同轉染方式的轉染效率和蛋白表達情況,以及在體內促進血管再生的效果,為基礎研究提供了參考10。綜上所述,選擇**適合的RNA轉染試劑需要綜合考慮轉染效率、細胞毒性、RNA需求、血清兼容性、多因子轉染能力以及實驗目的和應用場景等多個因素。在選擇轉染試劑時,可以參考已有的研究文獻,進行預實驗以評估不同試劑的性能,并根據實驗需求和條件選擇**合適的轉染試劑。寧夏體外轉染試劑肌內注射脂質體不能引起強烈的毒性反應,這與肺內或靜脈注射途徑的情況不同。
RNA轉染試劑在不同細胞類型中的效果存在***差異。以下將詳細闡述不同細胞類型對RNA轉染試劑效果的具體影響。腎*細胞系786-O和ACHN:微小RNA-1180(miR-1180)轉染對腎*細胞系786-O和ACHN生長有影響。實時定量(qRT)-PCR檢測顯示轉染miR-1180后,786-O和ACHN細胞中p21mRNA水平分別上調。Westernblot檢測表明p21蛋白表達趨勢與qRT-PCR結果相符,同時細胞周期蛋白依賴性激酶(CDK)4、CDK6和CyclinD1蛋白的表達明顯下調。流式細胞術(FCM)結果顯示轉染miR-1180后,位于G0/G1期的細胞比例明顯增大,而位于S期和G2/M期的細胞比例明顯下降,表明細胞周期被阻滯在G0/G1期。MTS結果顯示轉染miR-1180后,兩種腎*細胞活力明顯降低。集落形成實驗顯示miR-1180組的集落數數量明顯較少,表明細胞增殖能力降低1。HeLa細胞:兩種常見的RNA干擾(RNAi)轉染試劑DharmaFECT1和INTERFERin,在使用非靶向siRNAs的模擬轉染中,會引起HeLa細胞脂質組的改變。一些脂質對兩種可能化學性質不同的轉染試劑都有反應,而其他脂質種類只對其中一種試劑有反應。雖然這些脂質組改變的功能影響尚待研究,但實驗表明在RNAi實驗中使用適當的模擬轉染對照非常重要,比較好輔以正交擾動。
選擇合適的轉染試劑GenMute試劑在人肝*細胞模型中的應用:在人肝*細胞HepG2和Huh7.5中,研究對比了脂質體類的Lipofectamine?RNAiMAX和HepG2特異性的聚合物類GenMute?兩種轉染試劑30。通過細胞成像分析發現,GenMute處理的細胞對熒光標記的陰性對照siRNA的攝取高于LipofectamineRNAiMAX轉染的細胞。并且,MTT實驗表明,GenMute轉染的細胞比LipofectamineRNAiMAX處理的細胞具有更高的存活率。這提示在人肝*細胞模型中,GenMute試劑可能是更適合的轉染試劑,在提高轉染效率的同時降低了細胞死亡。siRNA共軛殼聚糖納米顆粒在脊髓損傷模型中的應用:在創傷性脊髓損傷(SCI)模型中,通過制備帶有抗體靶向部分的siRNA共軛殼聚糖復合物,以抑制誘導型一氧化氮合酶(iNOS)的表達,該復合物主要靶向M1巨噬細胞31。實驗結果表明,Ab-siRNA共軛殼聚糖納米顆粒在體外***降低了M1極化巨噬細胞中的iNOS表達,具有高轉染效率和低細胞毒性。在體內應用該納米顆粒后,SCI后的iNOS表達和細胞凋亡均減少。這說明在特定的病理模型中,針對性設計的納米顆粒轉染試劑可以在提高轉染效率的同時降低細胞死亡。在大腸桿菌細胞中復制的質粒通常含有二核苷酸頻率為1:16的CpG基序,這與細菌DNA中的頻率相似。
轉染試劑用量:轉染試劑的用量是影響轉染效率的重要因素之一。過多或過少的轉染試劑都可能導致轉染效率降低。在陽離子脂質體Lipofectamine2000對PC12細胞的轉染實驗中,發現lipo2000用量為5μL,DNA2μg,轉染時間為6h時,PC12細胞轉染率高達40%,且未影響細胞的正常分泌3。在脂質體介導法轉染腫瘤細胞效率的優化實驗中,研究了細胞接種密度、DNA用量、脂質體與DNA的比例等因素對脂質體轉染效率的影響。結果表明,2-5次細胞傳代,2×105接種密度、4μgDNA用量、2.5:1的脂質體與DNA比例、30min脂質體-DNA復合物形成時間以及6h細胞與復合物孵育時間,轉染效率比較高9影響物理轉染或機械轉染效率的因素在很大程度上取決于這些方法的基本原理。山東非脂質體轉染試劑
脂質復合物又稱陽離子脂質-核酸復合物(CLNACs)。中國澳門鄭州轉染試劑
RNA電穿孔高效轉染原代淋巴細胞:使用體外轉錄的mRNA通過電穿孔可以實現高基因轉染效率和低轉染相關毒性。例如,在用GFP或mCD62L轉染的受激原代人和鼠T淋巴細胞中觀察到90%以上的轉基因表達和80%以上的活細胞。GFPRNA對未刺激的人PBMC或鼠脾細胞進行電穿孔,分別產生95%和56%的GFP?細胞。此外,基因表達迅速且持久,對經過RNA電穿孔的T淋巴細胞未觀察到不良影響7。五、優化共轉染方法整合共轉染和平行共轉染:研究不同的共轉染和連續轉染方法,特別是體外轉錄信使RNA(IVTmRNA)。對于在納米載體形成之前預混合的IVTmRNAs(整合共轉染)和同時用單獨形成的納米載體轉染細胞(平行共轉染),分析決定共轉染效率的定量參數。同時遞送siRNA和mRNA也表明整合方法的比較高共轉染效率,但由于兩個**運營實體的峰值輸出在動力學上不同,連續交付的效率比較高。中國澳門鄭州轉染試劑