Purified Protein A

CUT&RUN和ChIC是兩種用于研究蛋白質-DNA相互作用的技術，它們有一些關鍵的區別：1.**技術原理**：-**ChIC（ChromatinImmunocleavage）**：ChIC技術利用抗體將感興趣的蛋白與ProteinA-MNase相結合來進行DNA切割。ChIC的優勢在于使用TF特異性抗體系住MNase，并只在結合位點裂解。-**CUT&RUN（CleavageUnderTargetsandReleaseUsingNuclease）**：CUT&RUN技術則是在核的輕微MNase處理后釋放單核小體和TF-DNA復合物，留下寡核小體。CUT&RUN通過在冰上進行簡短的消化反應，在TF結合的MNase擴散到周邊的基因組和裂解可接近的染色質之前在上清中恢復TF-DNA復合物。2.**操作步驟和簡便性**：-**ChIC**：ChIC可能需要甲醛固定操作，這可能重新引入了ChIP-seq的一些問題，如交聯導致的DNA和蛋白質的化學修飾。-**CUT&RUN**：CUT&RUN簡化了操作步驟，使用磁珠固定細胞核，適用于新鮮和冷凍組織樣本，縮短了生成DNA測序文庫的時間（1-2天）。3.**背景信號和信噪比**：-**ChIC**：ChIC產生的背景信號可能較高，因為它可能涉及到非特異性的DNA切割。

磁珠法在基因克隆中的應用主要體現在以下幾個方面：1.**質粒DNA的提取**：磁珠法可以用于從細菌細胞中提取質粒DNA，這對于質粒的克隆和表達至關重要。通過磁珠法提取的質粒DNA純度高，適合用于后續的酶切、連接、轉化等分子克隆步驟。2.**基因組DNA的提取**：磁珠法可以用于從各種生物樣本中提取基因組DNA，這對于基因組的克隆和分析非常重要。提取的基因組DNA可以用于PCR擴增、基因表達分析、基因突變檢測等。3.**mRNA的提取和純化**：在mRNA克隆中，磁珠法可以用于提取和純化mRNA，這對于cDNA的合成和基因表達分析非常關鍵。磁珠法提取的mRNA純度高，可以用于后續的cDNA合成和RT-PCR等實驗。4.**PCR產物的純化**：磁珠法可以用于純化PCR產物，去除反應中的酶、dNTPs和其他雜質，為克隆PCR產物提供高純度的DNA模板。5.**DNA片段的篩選和回收**：在基因克隆過程中，可能需要從多個DNA片段中篩選出特定大小或序列的片段。磁珠法可以用于DNA片段的篩選和回收，提高克隆效率。6.**自動化和高通量操作**：磁珠法易于與自動化設備結合，適合高通量樣本處理，這對于大規?；蚩寺№椖坑葹橹匾?。自動化操作減少了人為操作誤差，提高了實驗的重復性和可靠性。Recombinant Biotinylated Human IL-17A&F Protein,His-Avi Tag蛋白在表達過程中形成包涵體，需要通過復性步驟恢復其活性。這通常涉及物質的存在下進行蛋白質的重折疊。

在PCR實驗中，為了避免引物與已知序列的交叉反應，從而確保實驗的特異性，以下是一些關鍵的引物設計原則和策略：1.**選擇高保守性區域**：引物比較好設計在模板cDNA的保守區內，這樣可以確保引物與目標序列的特異性結合。通過比較不同物種的同一基因序列，可以確定基因的保守區。2.**避免引物與非目標序列的同源性**：設計引物時，應避免與基因組中的重復序列、假基因或高同源性區域設計引物?？梢酝ㄟ^BLAST等工具對引物進行同源性分析，確保引物只與目標序列結合。3.**引物長度和GC含量**：引物長度一般在15-30堿基之間，常用的是18-27bp。GC含量一般為40%-60%，以45-55%為宜。過高或過低的GC含量都不利于引發反應，上下游引物的GC含量和Tm值應保持接近。4.**避免引物的3'端錯配**：引物3'端的堿基應嚴格要求配對，特別是倒數第二個堿基，以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。引物3'端比較好不要選擇A，比較好選擇T，因為當末位鏈為T時，錯配的引發效率降低。5.**避免引物自身及引物之間的互補序列**：引物自身不應存在互補序列，否則引物自身會折疊成發夾結構，影響引物與模板的復性結合。前后引物之間也不應具有互補性，尤其應避免3'端的互補重疊以防止引物二聚體的形成。

T7EndonucleaseI（T7EI）是一種特殊的DNA內切酶，具有以下特點：1.**識別錯配DNA**：T7EI能夠識別并切割不完全配對的DNA、十字型結構DNA、Holliday結構或交叉DNA以及異源雙鏈DNA。2.**切割位點**：T7EI切割錯配位點5'端的、第二或第三個磷酸二酯鍵。3.**靈敏度**：T7EI對錯配DNA的識別非常靈敏，能夠檢測并切割單堿基和多堿基的錯配。4.**應用**：T7EI常用于CRISPR/Cas9等基因編輯技術導致的基因突變的鑒定。它通過識別錯配DNA來幫助鑒定基因編輯是否成功以及是否有非目標效應。5.**直接電泳檢測**：T7EI的產物可以直接通過電泳進行檢測，這使得它在實驗操作中更為方便。6.**來源**：T7EI來源于大腸桿菌菌株，是一種麥芽糖結合蛋白（MBP）和T7核酸內切酶I（T7EI）的融合蛋白。7.**成本效益**：盡管T7EI在商業上使用時成本較高，但它在大規模樣本測試中，尤其是在基因突變鑒定方面，提供了一種有效的篩選方法。8.**特殊注意事項**：T7EI能夠識別長度大于或等于2bp的插入、缺失或突變導致的錯配DNA，但不能識別1bp的插入、缺失或突變。這些特點使得T7EndonucleaseI成為基因突變鑒定中一個非常有用的工具，尤其是在CRISPR/Cas9等基因編輯技術的應用中。CRISPR-Cas12a（以前稱為Cpf1）是一種類II型V型內切酶，偏好富含胸腺嘧啶的原間隔短回文重復序列鄰近基序。

Cre重組酶在基因編輯中的操作主要涉及以下幾個步驟：1.**識別與結合**：-Cre重組酶首先識別并分別結合兩個LoxP序列的兩個反向重復序列，形成一個二聚體。2.**四聚體形成**：-兩個二聚體互相靠近，形成由四個Cre分子與兩個LoxP位點結合形成的四聚體復合物。3.**DNA切割與交換**：-Cre重組酶在每個LoxP位點的間隔序列中引導單鏈切割，產生帶有3’端羥基的斷裂。每個LoxP位點的兩個單鏈分別被切割。切割產生的自由3’端與對側的3’端進行交換和重連，形成Holliday交叉結構。4.**分子重組與解旋**：-Holliday交叉結構通過Cre酶的作用被解旋并重組，形成新的重組產物。這個過程導致兩個LoxP位點之間的DNA序列被刪除、反轉或易位，具體效果取決于LoxP序列的排列方式（方向和位置）。5.**條件性基因編輯**：-通過建立特異性Cre小鼠，該小鼠中的Cre重組酶由特定啟動子驅動，可在特定細胞或組織或全身表達Cre重組酶。與帶有Lox位點的Flox小鼠雜交，子代中可以獲得既帶有Cre又帶有Flox基因的小鼠，實現條件性基因打靶（表達或敲除靶基因）。One Step RT-qPCR SYBR Green Kit 是一種用于實時熒光定量PCR的試劑盒，它結合了反轉錄和PCR擴增步驟。Recombinant Biotinylated Human FGL1 Protein,His-Avi Tag

泛素激起酶E1（Ubiquitin-activating enzyme E1）在ATP的存在下激發泛素分子，形成E1-泛素硫酯中間體。Purified Protein A

Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL) 是一種從嗜熱脂肪芽孢桿菌（Thermophilic Geobacillus sp）DNA聚合酶I衍生的酶，缺乏5'-3'外切核酸酶活性。以下是關于Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL)的一些關鍵信息：來源和特性：Bst Plus DNA Polymerase 具有更強的5'-3' DNA聚合酶活性、鏈置換活性和dUTP耐受性，適合用于抗污染的等溫擴增反應，如LAMP和CPA等。應用：主要應用于等溫DNA擴增，包括環介導等溫擴增（LAMP）和其他等溫擴增技術。規格：活性定義：1 U指的是在65°C下30分鐘內將10 nmol的dNTP整合到酸不溶物質中的酶的量。溶液成分：包含10 mmol/L Tris-HCl、50 mmol/L KCl、0.1 mmol/L EDTA、1 mmol/L DTT、0.1% Triton X-100、50% 甘油，pH 7.5 @ 25℃。產品形式：提供的產品包括Hieff® Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL)，貨號14402ES，以及凍干粉形式的產品，貨號14405ES，不含甘油。靈敏度和穩定性：Bst Plus DNA Polymerase 具有高靈敏度，低至5copies目的基因可測，且在飛克（fg）級別的模板量下也能快速達到閾值。在37°C下，該酶可以保持相對穩定的效應長達5天，并且在-20℃下可以穩定保存2年。儲存條件：建議在-25℃至-15℃下儲存，以保持產品活性，并避免反復凍融。Purified Protein A