免疫組化的特點:
1)特異性強。免疫學的基本原理決定抗原與抗體之間的結合具有高度特異性,因此,免疫組化從理論上講也是組織細胞中抗原的特定顯示,如角蛋白(keratin)顯示上皮成分,LCA顯示淋巴細胞成分。只有當組織細胞中存在交叉抗原時,才會出現交叉反應。
2)敏感性高。在應用免疫組化的起始階段,由于技術上的限制,只有直接法、間接法等敏感性不高的技術,那時的抗體只能稀釋幾倍、幾十倍;現在由于ABC法或SP三步法的出現,使抗體稀釋上千倍、上萬倍甚至上億倍仍可在組織細胞中與抗原結合,這樣高敏感性的抗體抗原反應,使免疫組化方法越來越方便地應用于常規病理診斷工作。
3)定位準確、形態與功能相結合。該技術通過抗原抗體反應及呈色反應,可在組織和細胞中進行抗原的準確定位,因而可同時對不同抗原在同一組織或細胞中進行定位觀察,這樣就可以進行形態與功能相結合的研究,對病理學領域開展深入研究是十分有意義的。
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免疫組化的抗原修復
很多抗原的可視性可以通過抗原修復來提高,抗原修復可以打破福爾馬林固定時形成的蛋白質交聯,從而使被掩藏的抗原顯現出來。抗原修復技術包括不同時間長度的加熱或者利用蛋白酶來做酶消化,例如蛋白酶K,胰蛋白酶或胃蛋白酶。加熱的方法通常會用到微波爐,高壓鍋,蒸箱或水浴。將樣品在接近100°C高溫加熱20分鐘后再冷卻同等的時間。**常用的抗原修復液有a)檸檬酸鹽緩沖劑,pH6.0,b)Tris-EDTA,pH9.0和c)EDTA,pH8.0.如需要可用檸檬酸鹽緩沖劑做抗原修復:檸檬酸鹽緩沖劑配方:10mM檸檬酸鈉,0.05%Tween-20,pH6.0或10mM檸檬酸,0.05%Tween-20,pH6.0將含有檸檬酸鈉或檸檬酸鹽緩沖劑的染色盤放到蒸箱或者水浴中,預熱到95-100°C。將切片浸沒于染色盤中。蓋子虛掩,孵育20-40分鐘(研究者需自己決定比較好的孵育時間)。關掉蒸箱或水浴,將染色盤置于室溫下,讓切片冷卻20分鐘。在TBS-Tween-20中漂洗切片2次,每次2分鐘。開始封閉步驟。 黑龍江動物組織免疫組化推薦免疫組化結果分析是什么?
免疫組化技術應用于臨床cancer良惡性的判斷,英瀚斯生物為您介紹。對于反應性增生還是cancer性增生,可用免疫球蛋白(Ig)的輕鏈抗體檢測B淋巴細胞增生的單克隆或多克隆性來區別。在濾泡反應性增生時,濾泡反應中心的細胞不表達細胞凋亡蛋白(bcl-2),bcl-2陰性;而在濾泡性淋巴瘤中,由于90%以上cancer性濾泡細胞有bcl-2的高表達,bcl-2陽性。而增殖細胞核抗原(PCNA),周期素(Cycling),核抗原(Ki-67)通過對cancer細胞增生的程度作出評價,從而提示增生細胞的良惡性。
免疫組化的質量控制免疫組化的質量控制是確保實驗結果可靠性和重復性的關鍵步驟。質量控制包括實驗前的抗體驗證、實驗中的陽性對照和陰性對照,以及實驗后的結果評估??贵w驗證是通過Western blot或免疫熒光等方法驗證抗體的特異性和靈敏度。陽性對照是使用已知表達目標蛋白的組織或細胞,確保實驗系統的有效性。陰性對照是使用不表達目標蛋白的組織或細胞,排除非特異性結合。結果評估是通過圖像分析軟件對顯色結果進行定量評估,確保實驗結果的可靠性。有沒有能做免疫組化的實驗外包公司?效果好一點的。
免疫組化如何才能充分脫蠟?
(1)蠟不溶于水,如果脫蠟不干凈,少許蠟存留于切片上,將會引起染色不均勻、陽性物時隱時現、真假難辨、背景染色增加等。為了解決上述的問題,切片在染色前必須徹底脫蠟,目前用于脫蠟的試劑主要是二甲苯,因它脫蠟力強,脫蠟時間較短;
(2)脫蠟的時間要根據季節,室溫和試劑的新鮮謀面是在不同。如果在夏天,室溫較高,脫蠟試劑也新鮮,則脫蠟時間不需很多,3-5分鐘就已足夠。如果在冬天,室溫較低,脫蠟試劑也較陳舊,則脫蠟時間需要延長,10-20分鐘或更長。
(3)當天切的切片,燒烤2小時后進行染色,切片帶有溫度進行脫蠟這將可加速脫蠟的過程,如果預先切好烤好的切片,在染色前,還必須對切片進行加溫10-20分鐘,然后再行脫蠟,這樣脫蠟速度加快,效果魁偉更好??傊?,操作時應根據不同的季節,不同的室溫,不同的試劑來決定,脫蠟的時間,原則上是要徹底、干凈、完全地脫去切片上的蠟。
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病理醫師日常工作中經常說的一句話應該就是“做個免疫組化吧”;不管是臨床醫師,還是患者,他們問的多的問題則是“為什么要做免疫組化?”病理醫師通過“特殊染色”來進行細胞的識別。這一做法的依據是特定細胞和組織中的成分不同、則化學性質不同,通過染色的方法則可以呈現不同顏色。不過,由于組織固定或儲存等,會造成相應物質的活性降低甚至消失,因而限制了特殊染色方法的應用。隨著免疫學研究的進展,根據抗原與相應抗體間特異性結合的性質,則有了現在免疫組化的方法:不同細胞、不同組織中抗原有一定差異,抗體與被測組織中的特定抗原結合,進而通過一定顯色方法將結合的抗體顯示出來。如有相應顯色,則證實可能有被測抗原;無顯色則可能無被測抗原。當然,這一方法中需注意相應的“例外”,如抗體的非特異性結合、非特異性顯色,則容易造成“假陽性”;或者雖有相關抗原、但所用抗體與該抗原并未結合等,則容易造成“假陰性”。隨著免疫組化的應用經驗的增加,這些問題在常規應用中盡量得以避免,前者如各種顯色方法的優化;后者如抗原修復方法的優化、新型抗體開發及選擇。江蘇什么是免疫組化推薦