連云港微量定量PCR研究方案

聚合酶鏈式反應的常見問題：出現非特異性擴增帶：PCR擴增后出現的條帶與預計的大小不一致，或大或小，或者同時出現特異性擴增帶 與非特異性擴增帶。非特異性條帶的出現，其原因：一是引物與靶序列不完全互補、或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低，及PCR循環次數過多有關。其次是酶的質和量，往往一些來源的酶易出現非特異條帶而另一來源的酶則不出現，酶量過多有時也會出現非特異性擴增。其對策有：必要時重新設計引 物。減低酶量或調換另一來源的酶。降低引物量，適當增加模板量，減少循環次數。適當提高退火溫度或采用二溫度點法（93℃變性，65℃左右退火與延伸）。序列間特異性聚合酶鏈反應放大簡單重復序列之間的區域，以產生擴增片段長度的獨特指紋。連云港微量定量PCR研究方案

聚合酶鏈反應的常見問題分析與解決方法：MgCl2濃度過高。可適當降低其用量。模板量過多。質粒DNA的用量應<50 ng，而基因組DNA則應<200 ng。引物濃度不夠優化。對引物進行梯度稀釋重復PCR反應。循環次數過多；增加模板量減少循環次數至30，縮短退火時間及延伸時間，或改用二種溫度的PCR循環。退火溫度過低。電泳體系有問題：凝膠中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大；凝膠沒有凝固好；瓊脂糖質量差。若為PCR試劑盒則可能：由于運輸儲存不當引起試劑盒失效；試劑盒本身質量有問題，如引物選擇、循環參數等選擇不當。降解的陳舊模板擴增也易產生涂布。連云港微量定量PCR研究方案聚合酶鏈式反應可看作是生物體外的特殊DNA復制。

聚合酶鏈式反應的特點：特異性強，PCR反應的特異性決定因素為：引物與模板DNA特異正確的結合；堿基配對原則；Taq DNA聚合酶合成反應的忠實性；靶基因的特異性與保守性。其中引物與模板的正確結合是關鍵。引物與模板的結合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。聚合酶合成反應的忠實性及TaqDNA聚合酶耐高溫性，使反應中模板與引物的結合（復性）可以在較高的溫度下進行，結合的特異性增加，被擴增的靶基因片段也就能保持很高的正確度。再通過選擇特異性和保守性高的靶基因區，其特異性程度就更高。

聚合酶鏈反應：在檢測病原體方面,病原體培養是臨床診斷的金標準 .但是對于一些苛養菌 生長緩慢的細菌或難以培養的病原體等培養的陽性檢出率不高.檢測時間過長 無法滿足臨床早期快速診斷以指導醫治的需要[3]。當前 PCR 技術是在傳統 PCR 技術應用的基礎上進行的改進，包括實時定量 PCR 技術 、 實時熒光定量PCR、 PCR-酶聯免疫吸附試驗 、 巢式PCR等。 在PCR技術的輔助作用下，實驗室檢測也逐漸從生化免疫診斷過渡到基因診斷，生化免疫檢測主要從表型表現評估病癥，而基因診斷則深入本質探究其病因，以PCR 技術為主的核酸技術在臨床實驗室檢測與疾病診斷中表現出了明顯的應用價值，在未來的臨床醫學檢驗中必將會得到更加較廣的應用。熱啟動聚合酶鏈式反應：一種在PCR的初始建立階段減少非特異性擴增的技術。

聚合酶鏈式反應：三步：變性：模板DNA加熱變性；復性，引物與它的靶序列發生退火，引物DNA量多，使引物和模板在局部形成雜交鏈；延伸，4種dNTP 與 Mg2+ 存在的條件下，DNA合成酶催化以引物為起始點，按5'-3'方向進行延伸。上面三步為一個循環，可使拷貝數到達2*E－6-2*E－7。PCR產物一段雙鏈DNA，是由它的末端引物的5’端決定的。首輪擴增，其產物是大小不均一的DNA分子。長度應大于兩引物之間的長度。在第二個循環中，由于5'固定，其產物長度就由等于兩引物之間的長度。所以幾十個循環后就會產生大量的兩引物之間序列。聚合酶鏈式反應準備：PCR所用的酶主要有兩種來源：Taq和Pfu，分別來自兩種不同的噬熱菌。上海微量熒光PCR設計公司

聚合酶鏈式反應中兩個引物之間不應存在互補序列，尤其是避免3 ′端的互補重疊。連云港微量定量PCR研究方案

聚合酶鏈式反應（PCR）是一種用于放大擴增特定的DN段的分子生物學技術，它可看作是生物體外的特殊DNA復制，PCR的很大特點是能將微量的DNA大幅增加。因此，無論是化石中的古生物、歷史人物的殘骸，還是幾十年前兇殺案中兇手所遺留的毛發、皮膚或血液，只要能分離出一丁點的DNA，就能用PCR加以放大，進行比對。這也是“微量證據”的威力之所在。由1983年美國首先提出設想，1985年由其發明了聚合酶鏈反應，即簡易DNA擴增法，意味著PCR技術的真正誕生。到2013年，PCR已發展到第三代技術。連云港微量定量PCR研究方案