細胞轉染實驗注意事項:1.如為貼壁生長細胞,一般要求在轉染前一日,必須應用胰酶處理成單細胞懸液,重新接種于培養皿或瓶,轉染當日的細胞密度以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜,較好在轉染前4h換一次新鮮培養液。2.用于轉染的質粒DNA必須無蛋白質,無RNA和其他化學物質的污染,OD260/280比值應在1.8以上。3.培養基中的血清在開始準備DNA和陽離子脂質體試劑稀釋液時要使用無血清的培養基,因為血清會影響復合物的形成。其實,只要在DNA-陽離子脂質體復合物形成時不含血清,在轉染過程中是可以使用血清的。在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。蘇州細胞高效轉染試劑廠家
轉染技術:國際上推出了一些陽離子聚合物基因轉染技術,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。其中樹枝狀聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亞胺(Polyethylenimine,PEI)的轉染性能較佳,但樹枝狀聚合物的結構不易于進一步改性,且其合成工藝復雜。聚乙烯亞胺是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子,每相隔二個碳個原子,即每“第三個原子都是質子化的氨基氮原子,使得聚合物網絡在任何pH下都能充當有效的“質子海綿”(protonsponge)體。這種聚陽離子能將各種報告基因轉入各種種屬細胞,其效果好于脂質聚酰胺,經進一步的改性后,其轉染性能好于樹枝狀聚合物,而且它的細胞毒性低。大量實驗證明,PEI是非常有希望的基因治好載體。目前在設計更復雜的基因載體時,PEI經常做為中心組成成分。濟南細胞高效轉染試劑直銷價對于真核生物,轉染就是原核生物中轉化的同義詞。
細胞轉染效率低下的幾個大坑:1.試劑過期有時候轉染效率低下,還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年,百思不得其解。較后發現,原來是Lipofectamine 2000過期了。換了之后,立馬成功。根據我的經驗,盡量使用開封半年內的,因為過了半年后,就算沒有過失效期,但是細胞毒性較大增加,而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢,影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清,會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養基。根據毛博的經驗,其實也可以在原來的無血清培養基里面滴加血清。這個時候,較好不要換液,不要打擾細胞,讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入血清。過早的話,會引起未轉染的細胞瘋狂生長。那么,什么是較佳時機呢?在20%的細胞變圓的時候,就是加血清的較佳時機。
細胞轉染效率低下的幾個大坑:1. 細胞污染細胞污染也是造成細胞死亡,轉染效率低下的一大原因。首先,轉染細胞用的質粒必須保證無菌。而現在市場上的一般的質粒提取試劑盒都做不到較全無菌。毛博這里再貢獻一個獨門絕招:將提完質粒后或者提的較后一步,用75%乙醇沉淀,這樣就除菌了。2.質粒不行轉染用的質粒首先要保證數量,一般為2 μg以上。質粒純度不夠或者含有細菌LPS或其他對細胞有毒害作用的物質,也會影響轉染效率。這個時候,就應該對質粒進行純化和濃縮。操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。
細胞轉染的常用方法:細菌轉染:原理:對于用脂質體不能實現轉染的細胞,可以采用細菌轉染。可用于蛋白質過表達或克制,是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中,可用于難轉染細胞、原代細胞的穩定性轉染。實驗步驟:通過基因克隆生成重組細菌 → 采用非細菌法轉染包裝細胞系,擴增并分離得到重組細菌顆粒→純化并滴定細菌液→轉導目的細胞(含有細菌特異性的受體)→去除培養物中的細菌,并加入新鮮培養基→分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。對大多數細胞而言,均需要在轉染當天或前現在鋪板,第二天上午進行轉染。成都細胞高效轉染試劑廠家推薦
代細胞和傳代次數多的細胞都不是較佳選擇。蘇州細胞高效轉染試劑廠家
細胞轉染簡介:轉染 ,是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉染目前已成為實驗室工作中經常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例;化學介導方法很多,如經典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術;生物介導方法,有較為原始的原生質體轉染,和現在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法,應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優點。細菌介導的轉染技術,是目前轉染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優勢。但是,細菌轉染方法的準備程序復雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。蘇州細胞高效轉染試劑廠家