細(xì)胞凍存,我們應(yīng)該注意哪些事項(xiàng):DMSO快速稀釋會(huì)對(duì)細(xì)胞造成滲透性損傷,使存活率下降50%。對(duì)于DMSO凍存的細(xì)胞,復(fù)蘇后應(yīng)緩慢稀釋成細(xì)胞懸液:1)凍存液:培養(yǎng)基=1:1稀釋成細(xì)胞懸液后離心,然后重懸至培養(yǎng)皿中培養(yǎng),隔天換液;2)凍存液:培養(yǎng)基=1:10稀釋成細(xì)胞懸液,不用離心,直接放置到培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)2-4小時(shí)后,換液。上述兩種方法都是比較常用的細(xì)胞復(fù)蘇方法,后者更適用于原代細(xì)胞或比較難養(yǎng)的細(xì)胞。液氮內(nèi)的細(xì)胞凍存較長(zhǎng)時(shí)間不要超過半年,凍存在液氮中的細(xì)胞應(yīng)一段時(shí)間內(nèi)進(jìn)行更替。一個(gè)細(xì)胞系在培養(yǎng)一個(gè)月后,可復(fù)蘇一管新的細(xì)胞確保其質(zhì)量沒有發(fā)生太大變化,傳代幾次后,再凍存留種。無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能:不含動(dòng)物來(lái)源性蛋白,能減少各類病毒、霉菌和支原體等的污染。杭州成都無(wú)血清細(xì)胞凍存液
細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存,可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長(zhǎng)狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來(lái),這樣在需要的時(shí)候再?gòu)?fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。而且適度地保存一定量的細(xì)胞,可以防止因正在培養(yǎng)的細(xì)胞被污染或其他意外事件而使細(xì)胞丟種,起到了細(xì)胞保種的作用。為什么要進(jìn)行細(xì)胞凍存?連續(xù)培養(yǎng)的細(xì)胞系容易發(fā)生遺傳漂變,有限細(xì)胞系較終會(huì)發(fā)生衰老,所有培養(yǎng)的細(xì)胞都易受到微生物污染,即使運(yùn)轉(zhuǎn)情況較好的實(shí)驗(yàn)室也會(huì)遇到設(shè)備故障的問題。由于已建立的細(xì)胞系是一種寶貴資源,更換細(xì)胞系成本高昂,而且耗費(fèi)時(shí)間,因此,十分有必要將細(xì)胞冷凍起來(lái)長(zhǎng)期保存。除此之外,還可以利用細(xì)胞凍存的形式來(lái)購(gòu)買、寄贈(zèng)、交換和運(yùn)送某些細(xì)胞北京無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家程序降溫凍存技術(shù)要點(diǎn)是慢凍,標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序?yàn)榻禍厮俾?1~-2/℃ min。
無(wú)血清快速細(xì)胞凍存液保存條件:儲(chǔ)存于4℃以下。質(zhì)量保障期從產(chǎn)品的生產(chǎn)日期起,為期2年。3個(gè)月以上沒有使用凍存液計(jì)劃時(shí),盡可能-20℃冷凍保存。為避免重復(fù)凍融過程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低,推薦將產(chǎn)品分裝成小管后,再存放于4℃以下或-20℃冰箱凍存。無(wú)血清快速細(xì)胞凍存液細(xì)胞冷凍保存方法:選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1、按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2、按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。3、取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量,置于離心管中,離心收集培養(yǎng)細(xì)胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去離心管中的上清液。4、加入適量的無(wú)血清型細(xì)胞凍存液于離心管中,使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻,制成細(xì)胞混合液。5、將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6、直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-70℃以下冰箱,長(zhǎng)期冷凍保存。7、若研究者需要液氮保存時(shí),可將完全凍結(jié)的凍存管(放入-70℃以下冰箱后至少一晝夜)移至-196℃液氮罐。
以前在另一家實(shí)驗(yàn)室的時(shí)候,凍存細(xì)胞根本就沒有講究這些標(biāo)準(zhǔn)操作。凍存的細(xì)胞有293T、PT67、C2C12、MEF(鼠胚胎成纖維細(xì)胞)、HelaS3、HelaD、U2OS、HKC、RK3E、ECO、H292、HSY、COS7、SupT1等。將細(xì)胞酶消化后直接參與離心,加入凍存液(含90%的血清和10%的DMS0),直接放在-80℃冰箱。兩三天后移入液氮中,較久保存,幾年后細(xì)胞的活力仍沒有什么受損,照常能復(fù)蘇,成活率高。但有三點(diǎn)須注意:(1)一是細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)要好,不能長(zhǎng)得過稀,同樣也不能過密,細(xì)胞的狀態(tài)看起來(lái)相當(dāng)健康。70%密度的要保存的細(xì)胞須再長(zhǎng)24h才能全滿,萬(wàn)一細(xì)胞狀態(tài)不好,可以酶消化后再繁殖一次;(2)凍存細(xì)胞的量要留心,不能太密也不能太稀,一般1OOmm培養(yǎng)皿的細(xì)胞凍存為3~4管;(3)存放在-80℃冰箱的時(shí)間不能過長(zhǎng),一兩天后轉(zhuǎn)移到液氮罐里。我們也曾取出存放在-80℃冰箱的細(xì)胞,半年還有30%~50%的細(xì)胞有活性,但一年的細(xì)胞就沒有活的。無(wú)血清細(xì)胞凍存液 產(chǎn)品原理:無(wú)血清細(xì)胞凍存液,含多種保護(hù)劑成分。
細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):1、細(xì)胞貼壁少的問題:教科書中說(shuō)明凍存細(xì)胞解凍時(shí)1ml細(xì)胞液要加10ml-15m培養(yǎng)液,而在我的試驗(yàn)中的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。2、復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題:試驗(yàn)中我的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中,分裝過多,細(xì)胞濃度過低,不利于細(xì)胞的貼壁。3、加培養(yǎng)基的量放入問題:這個(gè)量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果你加培養(yǎng)基的太少,那么DMSO的濃度就會(huì)比較大,就會(huì)影響細(xì)胞生長(zhǎng),從以前的資料來(lái)看,DMSO的濃度在小于0.5%的時(shí)候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響,還有一個(gè)說(shuō)法是1%。所以如果你的凍存液的濃度是10%DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無(wú)害濃度。無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能:不含牛血清,無(wú)動(dòng)物源組分。昆明正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液進(jìn)貨價(jià)
根據(jù)密度調(diào)整細(xì)胞凍存 液用量。杭州成都無(wú)血清細(xì)胞凍存液
復(fù)蘇方:法1)從冰箱里取出細(xì)胞冷凍保存管,立即放入37℃振動(dòng)水浴槽中快速解凍。2)待凍存管中細(xì)胞混合液完全融化后,立即加入1ml細(xì)胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細(xì)胞混合,再將細(xì)胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細(xì)胞培養(yǎng)基的試管中,混合均勻。3)離心收集培養(yǎng)細(xì)胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4)清洗細(xì)胞,充分洗凈殘留凍存液。5)加入適量的新鮮細(xì)胞培養(yǎng)基,使用移液管緩緩地均勻細(xì)胞混合液。適量地稀釋后,將細(xì)胞混合液移至事先準(zhǔn)備好的培養(yǎng)瓶中。6)鏡檢后,研究者可根據(jù)各自方法和需要來(lái)進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。杭州成都無(wú)血清細(xì)胞凍存液