細胞轉染為什么不能加血清：不同的細胞及轉染試劑要求轉染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預實驗，比如：HeLa，293，CHO，COS7，MCF－7，HepG2等細胞，是否加血清，對不同的細胞是有不同的影響的，有些細胞是可以有血清的，有些加血清就會受影響。轉染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基，其一因為普通轉染試劑對細胞的毒性作用大，其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉染時不加血清是防止血清的干擾作用，轉染后可適時加入。加入過早會引起未轉染細胞的優(yōu)勢生長，過晚會引起較多細胞死亡。可實時觀察1/5細胞變圓的時候加入血清。瞬時轉染后，可在48h-72h細胞長滿之后，提取細胞蛋...

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.試劑過期有時候轉染效率低下，還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年，百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn)，原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后，立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗，盡量使用開封半年內(nèi)的，因為過了半年后，就算沒有過失效期，但是細胞毒性較大增加，而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢，影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清，會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗，其實也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候，較好不要換液，不要打擾細胞，讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入...

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.試劑過期有時候轉染效率低下，還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年，百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn)，原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后，立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗，盡量使用開封半年內(nèi)的，因為過了半年后，就算沒有過失效期，但是細胞毒性較大增加，而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢，影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清，會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗，其實也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候，較好不要換液，不要打擾細胞，讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入...

細胞轉染的常用方法：細菌轉染：原理：對于用脂質(zhì)體不能實現(xiàn)轉染的細胞，可以采用細菌轉染。可用于蛋白質(zhì)過表達或克制，是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中，可用于難轉染細胞、原代細胞的穩(wěn)定性轉染。實驗步驟：通過基因克隆生成重組細菌→采用非細菌法轉染包裝細胞系，擴增并分離得到重組細菌顆粒→純化并滴定細菌液→轉導目的細胞（含有細菌特異性的受體）→去除培養(yǎng)物中的細菌，并加入新鮮培養(yǎng)基→分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。蛋白表達和培養(yǎng)基的選擇哺乳動物細胞系合成可溶的。北京正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家推薦如何有效提高細胞轉染實驗效率：1.選擇高效的轉染方法不同轉染試劑有不同的轉染方法...

轉染的注意事項：培養(yǎng)基中的物品物品，比如青霉素和鏈霉素，是影響轉染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒，但陽離子脂質(zhì)體試劑增加了細胞的通透性，使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性，導致轉染效率低。所以，在轉染培養(yǎng)基中不能使用物品，甚至在準備轉染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣，在轉染前也不必潤洗細胞。對于穩(wěn)定轉染，不要在選擇性培養(yǎng)基中使用青霉素和鏈霉素，因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。珠海正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家現(xiàn)貨細胞轉染：(1)轉染試劑的準備A.將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。B.震蕩后...

細胞轉染常用步驟：1.轉染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存，使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉染試劑，再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時在一般實驗室中很難...

細胞電轉染實驗的幾點建議：1.電場強度要合適合適的電場強度對于電轉染實驗非常重要，電場強度不能過高，過高會增加細胞的死亡率；也不能過低，過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值，實驗前應測定所轉染細胞系的較佳電場強度。2.細胞狀態(tài)要好用于電轉的細胞一般選取處于對數(shù)生長期的細胞（15代以內(nèi)，傳代后2d）。因為處于對數(shù)生長期的細胞分裂旺盛，表面結構致密比穩(wěn)定期的細胞差，電轉后，細胞膜的恢復能力強，而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA到時后，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液。廣州正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家推薦細胞轉染是指將外源分子如DNA，RNA等導入真核細胞的技術...

細胞轉染：(1)轉染試劑的準備A.將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。B.震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存，使用前還需震蕩，。(2)選擇合適的混合比例(1：1-1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉染試劑，再次震蕩。(3)將混合液在室溫放置10—15分鐘。(4)吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。(5)加入混合液，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。(6)到時后，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時。對于轉...

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.試劑過期有時候轉染效率低下，還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年，百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn)，原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后，立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗，盡量使用開封半年內(nèi)的，因為過了半年后，就算沒有過失效期，但是細胞毒性較大增加，而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢，影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清，會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗，其實也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候，較好不要換液，不要打擾細胞，讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入...

細胞轉染方法：1.脂質(zhì)體轉染法陽離子脂質(zhì)體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用，將DNA分子包裹入內(nèi)，形成DNA脂復合物，也能被表面帶負電的細胞膜吸附，再通過融合或細胞內(nèi)吞進入細胞。脂質(zhì)體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中，是目前實驗室較方便的轉染方法之一，其轉染率較高，優(yōu)于磷酸鈣法。由于脂質(zhì)體對細胞有一定的毒性，所以轉染時間一般不超過24小時。常用細胞類型：cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.電穿孔轉染法電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內(nèi)，這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質(zhì)體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。一般...

細胞電轉染實驗的幾點建議：1.電場強度要合適合適的電場強度對于電轉染實驗非常重要，電場強度不能過高，過高會增加細胞的死亡率；也不能過低，過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值，實驗前應測定所轉染細胞系的較佳電場強度。2.細胞狀態(tài)要好用于電轉的細胞一般選取處于對數(shù)生長期的細胞（15代以內(nèi)，傳代后2d）。因為處于對數(shù)生長期的細胞分裂旺盛，表面結構致密比穩(wěn)定期的細胞差，電轉后，細胞膜的恢復能力強，而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA瞬時和穩(wěn)定表達DNA轉染后，轉入基因的表達可以在1－4天內(nèi)檢測到。鄭州細胞高效轉染試劑報價細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧：一、...

細胞轉染實驗注意事項：1.如為貼壁生長細胞，一般要求在轉染前一日，必須應用胰酶處理成單細胞懸液，重新接種于培養(yǎng)皿或瓶，轉染當日的細胞密度以70-90%（貼壁細胞）或2×106-4×106細胞/ml（懸浮細胞）為宜，較好在轉染前4h換一次新鮮培養(yǎng)液。2.用于轉染的質(zhì)粒DNA必須無蛋白質(zhì)，無RNA和其他化學物質(zhì)的污染，OD260/280比值應在1.8以上。3.培養(yǎng)基中的血清在開始準備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基，因為血清會影響復合物的形成。其實，只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物形成時不含血清，在轉染過程中是可以使用血清的。有血清時的轉染 血清一度曾被認為會降低轉染效率。北京...

細胞轉染，你至少要掌握以下幾點：主要有下面幾種方法：：化學法：磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質(zhì)體法；物理法：電穿孔法、顯微注射法、顆粒傳遞法；細菌介導法：逆轉錄細菌、腺細菌A.陽離子脂質(zhì)體法：帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內(nèi)吞。特點：簡單通用，適用性廣，轉染效率高，重復性好，但轉染時需除血清，轉染效率隨細胞類型變化大。由于脂質(zhì)體復合物與貼壁細胞的接觸機會遠大于懸浮細胞，所以貼壁比懸浮轉染效率要高。懸浮細胞建議使用電穿孔法。B.電穿孔法：利用高壓電脈沖對細胞膜的干擾，使其形成利于核酸進入的微孔。在轉染過程中是可以使用血清的。蕪湖細胞高效轉染試劑廠家推薦細胞轉染的注...

轉染方式：細胞由帶負電荷的磷脂雙分子層構成，這對大分子物質(zhì)來說是個不可透過的屏障，比如DNA和RNA的磷酸骨架，其也帶負電荷。為了使核酸穿過細胞膜，研究人員開發(fā)了多種技術，大致分為三類：化學方法---利用載體分子包被核酸使其呈現(xiàn)中性電荷或正電荷。生物方法---利用基因工程細菌轉染非細菌基因到細胞中。物理方法---在細胞膜表面產(chǎn)生一個瞬時的孔從而導入DNA。然而，沒有一種方法適用于所有的細胞和實驗，理想的方法應根據(jù)您的細胞類型和實驗需要進行選擇，理想的方法應具有高轉染效率，低細胞毒性和對正常生理學的影響較小，并且易于使用和可重復性等特點。細胞密度以及轉染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉染...

細胞轉染實驗簡介實驗步驟：1、細胞傳代(1)試驗準備：200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌)，酒精棉球，廢液缸，試管架，微量移液器，記號筆，培養(yǎng)皿，離心管。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基，用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液，消化1分鐘(37。C，5%CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁，觀察到細胞完全從壁上脫落下來為止。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應。(5)用頭多次吹吸，使細胞完全分散開。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中，1000rpm離心5min。(7)用培養(yǎng)液重懸細胞，細胞計數(shù)后選擇0.8X106個細胞加入一個35mm培養(yǎng)皿。(8)將合適體積完全...

細胞轉染實驗注意事項：1.培養(yǎng)基中的物品物品是影響轉染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒，但陽離子脂質(zhì)體試劑增加了細胞的通透性，使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性，導致轉染效率降低。這時候可以選擇Entranster轉染試劑，非脂質(zhì)體試劑，培養(yǎng)基可加物品，避免了細胞染菌。2.設置陽性對照和陰性對照。3.一般在轉染24-48h，靶基因即在細胞內(nèi)表達。根據(jù)不同的實驗目的，24-48h后即可進行靶基因表達的檢測實驗。4.如若建立穩(wěn)定的細胞系，則可對靶細胞進行篩選，根據(jù)不同基因載體中所含有的抗性標志選用相應的藥物，常用的真核表達基因載體的標志物有潮霉素和新霉素等。細胞轉染是完成這一過程的...

細胞轉染的注意事項：血清A、DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物形成時不能含血清，因為血清會影響復合物的形成。B、一般細胞對無血清培養(yǎng)可以耐受幾個小時沒問題，轉染用的培養(yǎng)液可以含血清也可以不加，但血清一度曾被認為會降低轉染效率，轉染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。C、對于對血清缺乏比較敏感的細胞，可以使用營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基，或者在轉染培養(yǎng)基中使用血清。對血清缺乏比較敏感的貼壁細胞，建議使用**轉染試劑。有條件的話，可以用無血清培養(yǎng)基代替PBS洗細胞兩遍，注意洗的時候要輕，靠邊緣緩緩加入液體，然后不要吹吸細胞而是轉動培養(yǎng)板讓液體滾動在細胞表面。如果洗的太厲害，細胞又損失一部分，加了脂質(zhì)體后，細胞受...

轉染的注意事項：有血清時的轉染血清一度曾被認為會降低轉染效率，但只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物形成時不含血清，在轉染過程中是可以使用血清的。轉染過程在兩步中需要使用培養(yǎng)基做為稀釋液：在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物準備過程以及復合物同細胞接觸過程。在開始準備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基，因為血清會影響復合物的形成。但在復合物形成后，在加入細胞中前可以加入血清。陽離子脂質(zhì)體和DNA的較佳量在使用血清時會有所不同，因此如果你想在轉染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內(nèi)保持健康。對于對血清缺乏比較敏感的細胞，可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培...

瞬時轉染和轉染效率的監(jiān)測：基因的瞬時表達在24-72小時內(nèi)就結束了。這種快速的瞬時表達非常適用于驗證質(zhì)粒表達和監(jiān)測轉染步驟的效率。可以使用報告基因來確定優(yōu)化條件，其表達蛋白易檢測，在目的細胞中不含此蛋白或水平很低。常用的報告基因包括氯霉素乙酰轉移酶（CAT），綠色熒光蛋白（GFP），熒光素酶（Lux或Luc）以及b-半乳糖苷酶（b-gal）。可以使用簡單的非同位素方法檢測b-gal的表達以測定轉染效率和活性。pCMVSPORT-bgal質(zhì)粒包含CMV啟動子調(diào)控下的LacZ基因，轉染入真核細胞內(nèi)后可以直接表達bgal。結合簡單的檢測步驟，可以做為監(jiān)測轉染條件的一種方便靈敏的方法。一類是瞬時轉染，...

瞬時轉染和轉染效率的監(jiān)測：基因的瞬時表達在24-72小時內(nèi)就結束了。這種快速的瞬時表達非常適用于驗證質(zhì)粒表達和監(jiān)測轉染步驟的效率。可以使用報告基因來確定優(yōu)化條件，其表達蛋白易檢測，在目的細胞中不含此蛋白或水平很低。常用的報告基因包括氯霉素乙酰轉移酶（CAT），綠色熒光蛋白（GFP），熒光素酶（Lux或Luc）以及b-半乳糖苷酶（b-gal）。可以使用簡單的非同位素方法檢測b-gal的表達以測定轉染效率和活性。pCMVSPORT-bgal質(zhì)粒包含CMV啟動子調(diào)控下的LacZ基因，轉染入真核細胞內(nèi)后可以直接表達bgal。結合簡單的檢測步驟，可以做為監(jiān)測轉染條件的一種方便靈敏的方法這會導致和轉染相關...

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.試劑過期有時候轉染效率低下，還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年，百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn)，原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后，立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗，盡量使用開封半年內(nèi)的，因為過了半年后，就算沒有過失效期，但是細胞毒性較大增加，而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢，影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清，會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗，其實也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候，較好不要換液，不要打擾細胞，讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入...

轉染的注意事項：用于蛋白生產(chǎn)的細胞的轉染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達蛋白，因為血清蛋白會干擾下游表達蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對某一特定細胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清，一般含有不均一的或大量的蛋白（但比添加血清的培養(yǎng)基低得多）。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物，限定化學成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應用的一種。在含血清時轉染的細胞可以適應無血清培養(yǎng)基，無蛋白培養(yǎng)基或限定化學成分的培養(yǎng)基。在部分情況下（如293-F，293-H，COS-7和CHO-S），對于已適應無血清或無蛋白培...

如何提高細胞轉染實驗效率：優(yōu)化細胞生長狀態(tài)密切觀察您的細胞;確保它們狀態(tài)良好。在開始轉染細胞之前，先制定一個適當?shù)姆N板方案，使細胞密度從轉染開始到結束都保持較佳狀態(tài)。增加成功幾率—細胞是轉染過程中的一個關鍵元素，它可以是影響結果的一致性和質(zhì)量的較重要的變量。此外，還常用促有絲分裂刺激物(如，細菌轉化，生長因子，條件培養(yǎng)基，以及滋養(yǎng)細胞)來活化原代培養(yǎng)細胞。貼壁細胞相比較懸浮細胞—在轉染效率方面貼壁細胞和懸浮細胞之間的差異明顯。天生趨于懸浮的細胞(如HL60，Jurkat)非常難以轉染。相反，天生為貼壁的細胞(如HEK，CHO)則可適應懸浮生長的條件。對于貼壁細胞，一般要求在轉染前一日，用胰酶處...

細胞轉染簡介：轉染，是將外源性基因導入細胞內(nèi)的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例；化學介導方法很多，如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導的技術；生物介導方法，有較為原始的原生質(zhì)體轉染，和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法，應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導的轉染技術，是目前轉染效率較高的方法，同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是，細菌轉染方法的準備程序復雜，常常對細胞類型有很強...

細胞轉染的注意事項：細胞狀態(tài)這點非常重要，不要急于求成，一定要讓細胞處于較佳的生長狀態(tài)再做。有文獻說傳代不要超過17代。細胞復蘇后的3代左右時細胞狀態(tài)較好，不要用傳了很多代的細胞去做，細胞的形態(tài)都會發(fā)生變化。大多數(shù)已建立的細胞系都是非整倍體，原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變，總染色體重組或基因調(diào)控變化等而演化。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化，融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。因此，如果觀察到轉染效率降低，可以試著轉染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結果。或者，幾種來源于經(jīng)篩選，轉染效率較高細胞亞系的細胞系現(xiàn)...

如何提高細胞轉染效率：1.組織培養(yǎng)試劑優(yōu)化細胞生長條件。只使用新鮮配制的培養(yǎng)基和添加劑，并經(jīng)可能減少所用試劑的變更。基礎培養(yǎng)基—目前所使用的各種市售培養(yǎng)基(如，RPMI1640和DMEM)。培養(yǎng)基的成分包括營養(yǎng)物質(zhì)(氨基酸，葡萄糖)，維生素，無機鹽，和緩沖物質(zhì)。有些成分非常不穩(wěn)定，因此如果不在使用時新鮮加入就可能會產(chǎn)生問題。務必要使培養(yǎng)基避光保存。因為已知有一些組分和緩沖物質(zhì)，如HEPES，當暴露于光照下就會分解產(chǎn)生細胞毒性物質(zhì)。另外，血清，添加劑，來自于培養(yǎng)箱內(nèi)的污染物、化學物質(zhì)，或/細胞的污染也都可能影響到細胞生理。2.細胞生長狀態(tài)密切觀察您的細胞;確保它們狀態(tài)良好。在開始轉染細胞之前，先...

細胞轉染實驗簡介：實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導法和細菌介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質(zhì)粒進入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現(xiàn)在對于很多普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質(zhì)體法選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細胞進行轉染。珠海細胞高效轉染試劑廠家供應轉染效率：線型PEI(LinePEI,LPEI)...

細胞轉染簡介：轉染，是將外源性基因導入細胞內(nèi)的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例；化學介導方法很多，如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導的技術；生物介導方法，有較為原始的原生質(zhì)體轉染，和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法，應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導的轉染技術，是目前轉染效率較高的方法，同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是，細菌轉染方法的準備程序復雜，常常對細胞類型有很強...

細胞轉染簡介：轉染，是將外源性基因導入細胞內(nèi)的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例；化學介導方法很多，如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導的技術；生物介導方法，有較為原始的原生質(zhì)體轉染，和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法，應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導的轉染技術，是目前轉染效率較高的方法，同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是，細菌轉染方法的準備程序復雜，常常對細胞類型有很強...

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.準備不足做脂質(zhì)體轉染的時候，在開展正式實驗前要多做預試驗，優(yōu)化轉染條件。優(yōu)化轉染條件包括：脂質(zhì)體的用量、DNA密度、細胞密度、脂質(zhì)體和DNA混合孵育時間等等。2.電壓過大做電轉的時候，如果電壓太大，往往會發(fā)生細胞大量死亡的情況。不同的細胞，需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預實驗，多摸索條件。對于大多數(shù)細胞來說，其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外，就是進行轉染的細胞應該處于對數(shù)生長期。處于對數(shù)生長期的細胞的抗損傷能力是較強的。細胞濃度應該處于5x106到1x107／mL之間。每次轉染的質(zhì)粒應該控制在4-6μg，如果﹥10μg，轉染效率也較大降低。電...