在核酸遞送中的應用核酸***可以通過基因增強、基因抑制和基因組編輯實現持久甚至***的效果。然而,裸核酸分子難以進入細胞,陽離子聚合物作為非病毒核酸遞送系統,其分子上帶有正電荷基團,可濃縮核酸分子形成納米顆粒,幫助核酸跨越屏障在細胞中表達蛋白質或抑制目標基因表達。陽離子聚合物易于合成、修飾和結構控制,是一類有前途的核酸遞送系統7。在顱內遞送合成mRNA中的應用在本研究中,使用常用的轉染試劑建立了顱內遞送合成mRNA的小鼠模型。將合成的熒光素酶mRNAs用兩種不同的轉染試劑包裹后定點微注射到大腦中,通過小動物成像系統監測遞送的mRNA的表達狀態,并通過行為和血液生化測量評估可能的試劑誘導的生物毒性。該模型表明,合成mRNA可以用常用的轉染試劑成功遞送到大腦中,且沒有可測量的毒性,外源性mRNA的表達在顱內注射后在合理的時間內持續存在。合成修飾的TRAILmRNA也被用作***應用的例子**估轉染效率至關重要,特別是在需要高轉染效率以保證特定下游靶標轉錄后調控的功能研究中。遼寧轉染試劑難轉染
在腺相關病毒載體(AAV)生產中的應用納米凝膠由微流體產生,作為標準轉染試劑如聚乙烯亞胺-MAX(PEI-MAX)的新型替代品,用于生產具有可比產量的AAV載體。在pDNA重量比為1:1:2和1:1:3(分別為pAAV順式質粒、pDG9衣殼反式質粒和pHGTI輔助質粒)時形成納米凝膠,在小規模下,載體產量與PEI-MAX相比沒有***差異。氮/磷酸鹽比為5和10的1:1:2重量比的納米凝膠分別產生約8.8×10?vg/mL和約8.1×10?vg/mL的產量,而PEI-MAX約為1.1×10?vg/mL。在大規模生產中,優化的納米凝膠以約7.4×1011vg/mL的滴度產生AAV,與PEI-MAX的約1.2×1012vg/mL相比沒有統計學差異,表明可以用易于實施的微流體技術以相對較低的成本實現與傳統試劑相當的滴度10。湖北體外轉染試劑常用的物理/機械轉染方法包括電穿孔、聲孔、基因顯微注射和激光照射。
魚精蛋白作為RNA遞送穩定劑具有重要作用,其具體作用機制主要包括以下幾個方面:一、保護RNA免受降解魚精蛋白是一種天然陽離子肽混合物,由于其帶正電荷的特性,可以與帶負電荷的RNA通過相反電荷驅動耦合23。在生物系統中,RNA很容易被RNase降解,而魚精蛋白可以與RNA復合,形成穩定的復合物,從而保護RNA免受降解1213。例如,通過將單鏈RNA(ssRNA)與帶正電荷的蛋白魚精蛋白復合,可以穩定陰離子RNA1213。二、增強細胞穿透性魚精蛋白不僅可以保護RNA,還能增強RNA的穿透細胞的能力。魚精蛋白-RNA復合物的形成具有雙重功能,一方面保護RNA不被降解,另一方面增強其穿透進入細胞的能力23。這種增強的細胞穿透性可能是由于魚精蛋白的陽離子性質,使其能夠與細胞膜相互作用,促進RNA的進入細胞2。
RNA電穿孔高效轉染原代淋巴細胞:使用體外轉錄的mRNA通過電穿孔可以實現高基因轉染效率和低轉染相關毒性。例如,在用GFP或mCD62L轉染的受激原代人和鼠T淋巴細胞中觀察到90%以上的轉基因表達和80%以上的活細胞。GFPRNA對未刺激的人PBMC或鼠脾細胞進行電穿孔,分別產生95%和56%的GFP?細胞。此外,基因表達迅速且持久,對經過RNA電穿孔的T淋巴細胞未觀察到不良影響7。五、優化共轉染方法整合共轉染和平行共轉染:研究不同的共轉染和連續轉染方法,特別是體外轉錄信使RNA(IVTmRNA)。對于在納米載體形成之前預混合的IVTmRNAs(整合共轉染)和同時用單獨形成的納米載體轉染細胞(平行共轉染),分析決定共轉染效率的定量參數。同時遞送siRNA和mRNA也表明整合方法的比較高共轉染效率,但由于兩個**運營實體的峰值輸出在動力學上不同,連續交付的效率比較高。共轉染是將一種以上類型的核酸引入真核細胞的過程。
陽離子聚合物作為轉染試劑結合機制:以陽離子聚合物EZTransCellReagent為例,在優化RNA干擾(RNAi)條件的研究中發現,陽離子聚合物通過與RNA分子結合來實現轉染14。例如,設計針對GFP的shRNA,使用EZ轉染試劑將其轉染到細胞中,shRNA***降低了GFP的表達。預稀釋的轉染試劑在室溫下以及小核酸的存在可增加轉染效率,且在24小時時達到峰值。與環狀核酸相比,線性核酸與陽離子聚合物結合時顯示出更高的轉染效率和更高的基因組整合率。作用特點:陽離子聚合物介導的RNAi條件優化后,為未來的RNAi研究提供了有用的數據。超聲輔助轉染涉及在宿主細胞膜上制造微小的孔,以促進核酸(包括DNA和RNA)的傳遞。中國澳門鄭州轉染試劑
在選擇合適的小RNA分子進行轉染相關功能分析之前,應先確定其實驗需要。遼寧轉染試劑難轉染
脂質體轉染是一種常用的將外源基因導入細胞的方法,脂質體大小:脂質體的大小也可能影響轉染效率。較小的脂質體可能更容易進入細胞,但可能攜帶的 DNA 量較少。較大的脂質體可能攜帶更多的 DNA,但可能更難進入細胞。研究發現,陽離子脂質體的大小與轉染效率之間存在一定的關系。隨著脂質體尺寸的增加,轉染的主要途徑可能從網格蛋白介導的內吞作用轉變為脂筏介導的內吞作用,同時也可能觀察到巨胞飲作用。這種變化可能會影響脂質體在細胞內的運輸和釋放,從而影響轉染效率。遼寧轉染試劑難轉染