GFAP免疫熒光試驗

免疫熒光的制作：樣品準備（貼壁細胞、懸浮細胞以及組織等）：對于貼壁細胞：先將潔凈的蓋玻片在70%乙醇中進行浸泡處理，然后用干凈無菌的鑷子放置到培養皿中，用無菌PBS洗去殘留的乙醇。待細胞接近長成單層后取出蓋玻片，操作小心，防止細胞脫片。對于懸浮細胞：有2種方法，①先在懸浮液中進行固定步驟，然后把細胞滴加在載玻片上，干燥后細胞會緊貼在載玻片上。②先在懸浮液中進行固定和染色步驟，離心洗脫，然后用移液管移至盒式玻片進行后續染色步驟。對于冷凍切片：切片放置在載玻片上后，可以直接進行固定等后續操作。對于石蠟切片：免疫熒光中石蠟切片較少，要先進行脫蠟和抗原修復處理。免疫熒光技術可以用于研究肉瘤的發生和發展過程。GFAP免疫熒光試驗

免疫熒光的原理：免疫學的基本反應是抗原-抗體反應。由于抗原抗體反應具有高度的特異性，所以當抗原抗體發生反應時，只要知道其中的一個因素，就可以查出另一個因素。免疫熒光技術就是將不影響抗原抗體活性的熒光色素標記在抗體（或抗原）上，與其相應的抗原（或抗體）結合后，在熒光顯微鏡下呈現一種特異性熒光反應。直接法:將標記的特異性熒光抗體，直接加在抗原標本上，經一定的溫度和時間的染色，用水洗去未參加反應的多余熒光抗體，室溫下干燥后封片、鏡檢。mpo免疫熒光檢查免疫熒光技術可以用于研究病毒傳播和免疫應答。

檢測復雜的生物學結構需要較高清晰度的熒光信號，并將熒光信號從背景噪聲中分離開來。標準的免疫熒光標記很少能夠獲得較佳信噪比的成像效果。獲得良好圖片和較佳的可供發表的高質量圖像之間的差異就在于：需要精細調整樣品信號達到峰值特異性、高清晰度和較佳放大倍數。雖然熒光基團是進行高質量細胞成像的較佳選擇，但不可避免地也極易發生光漂白，即熒光信號的光化學降解或衰退。任何光敏感度的下降都可能導致數據出現偏差，產生假性結果。抗淬滅封片劑可以保護熒光標記蛋白的穩定性，維持數周乃至數月的圖像信號完整度。

熒光標記二抗的選擇普遍；與使用熒光素結合一抗的檢測相比，成本較低。間接免疫熒光的缺點：由于需要具有兩種不同物種反應性的兩種抗體，因此物種交叉反應性問題增加；與直接免疫熒光相比，時間更長（操作步驟更多）。間接免疫熒光的優點：通過增加能夠與一抗結合的二抗數量進行信號放大；與直接免疫熒光相比，通過信號放大提高檢測靈敏度；熒光標記二抗的選擇普遍；與使用熒光素結合一抗的檢測相比，成本較低。間接免疫熒光的缺點：由于需要具有兩種不同物種反應性的兩種抗體，因此物種交叉反應性問題增加；與直接免疫熒光相比，時間更長（操作步驟更多）。免疫熒光技術可以用于研究疾病的發生機制和醫治效果評估。

熒光色素：四甲基異硫氰酸羅丹明（tetramethylrhodamineisothiocyanate，TRITC）結構式如下：較大吸引光波長為550nm，較大發射光波長為620nm，呈橙紅色熒光。與FITC的翠綠色熒光對比鮮明，可配合用于雙重標記或對比染色。其異硫氰基可與蛋白質結合，但熒光效率較低。免疫熒光技術又稱熒光抗體技術，是標記免疫技術中發展較早的一種。它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術。很早以來就有一些學者試圖將抗體分子與一些示蹤物質結合，利用抗原抗體反應進行組織或細胞內抗原物質的定位。早期的免疫熒光技術是將抗體與示蹤物質結合，用于定位組織或細胞內的抗原物質。E-cad免疫熒光染色

免疫熒光技術可以用于研究細胞凋亡、細胞增殖和細胞分化等生物學過程。GFAP免疫熒光試驗

免疫熒光實驗的注意事項：對熒光標記的抗體的稀釋，要保證抗體的蛋白有一定的濃度，一般稀釋度不應超過1：20，抗體濃度過低，會導致產生的熒光過弱，影響結果的觀察。染色的溫度和時間需要根據各種不同的標本及抗原而變化，染色時間可以從10min到數小時，一般30min已足夠。染色溫度多采用室溫（25℃左右），高于37℃可加強染色效果，但對不耐熱的抗原（如流行性乙型腦炎病毒）可采用0-2℃的低溫，延長染色時間。低溫染色過夜較37℃30min效果好的多。GFAP免疫熒光試驗