PCR原理:PCR是在試管中進行的DNA復制反應,基本原理是依據細胞內DNA半保留復制的機理,以及體外DNA分子于不同溫度下雙鏈和單鏈可以互相轉變的性質,人為地控制體外合成系統的溫度,以促使雙鏈DNA變成單鏈,單鏈DNA與人工合成的引物退火,然后耐熱DNA聚合酶以dNTP為原料使引物沿著單鏈模板延伸為雙鏈DNA。PCR全過程每一步的轉換是通過溫度的改變來控制的。需要重復進行DNA模板解鏈、引物與模板DNA結合、DNA聚合酶催化新生DNA的合成,即高溫變性、低溫退火、中溫延伸3個步驟構成PCR反應的一個循環,此循環的反復進行,就可使目的DNA得以迅速擴增。DNA模板變性:模板雙鏈DNA?單鏈DNA,94℃。退火:引物+單鏈DNA?雜交鏈,引物的Tm值。引物的延伸:溫度至70℃左右,TaqDNA聚合酶以4種dNTP為原料,以目的DNA為模板,催化以引物3’末端為起點的5’→3’DNA鏈延伸反應,形成新生DNA鏈。新合成的引物延伸鏈經過變性后又可作為下一輪循環反應的模板PCR,就是如此反復循環,使目的DNA得到高效快速擴增。哪些公司可以做pcr檢測?浙江高質量pcr多少錢
PCR反應的特異性決定因素為:①引物與模板DNA特異正確的結合;②堿基配對原則;③TaqDNA聚合酶合成反應的忠實性;④靶基因的特異性與保守性。其中引物與模板的正確結合是關鍵。引物與模板的結合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。聚合酶合成反應的忠實性及TaqDNA聚合酶耐高溫性,使反應中模板與引物的結合(復性)可以在較高的溫度下進行,結合的特異性明顯增加,被擴增的靶基因片段也就能保持很高的正確度。再通過選擇特異性和保守性高的靶基因區,其特異性程度就更高。江蘇高質量pcr實驗室英瀚斯生物可承接臨床樣本、動物組織、細胞樣本各類pcr檢測。
PCR實驗技術中的巢氏PCR(NestedPCR)介紹:巢氏PCR需要兩到三對引物,一般采用較為套引物擴增15-30個循環,再用擴增DNA的片段內設定的第二套引物擴增15-30個循環,這樣可使待擴增序列得到高效擴增,而次級結構卻很少擴增。套式引物PCR減少了引物非特異性退火,從而增加了特異性擴增,提高了擴增效率。若將套失PCR的內外引物稍加改變,延長外引物長度(25-30bp),同時縮短內引物長度(15-17bp),使外引物先在高退火溫度下復性,做雙溫擴增,然后改換至三溫循環,使內引物在外引物擴增的基礎上,在低退火溫度復性,直到擴增完成,這樣就可以使兩套引物一次同時加入。
PCR實驗技術中cDNA第二鏈的合成方法有以下幾種:1、自身引導法合成的單鏈cDNA3'端能夠形成一短的發夾結構,這就為第二鏈的合成提供了現成的引物,當***鏈合成反應產物的DNA:RNA雜交鏈變性后利用大腸桿菌DNA聚合酶ⅠKlenow片段或反轉錄酶合成cDNA第二鏈,***用對單鏈特異性的S1核酸酶消化該環,即可進一步克隆。但自身引導合成法較難控制反應,而且用S1核酸酶切割發夾結構時無一例外地將導致對應于mRNA5'端序列出現缺失和重排,因而該方法目前很少使用。2、置換合成法該方法利用鏈在反轉錄酶作用下產生的cDNA:mRNA雜交鏈不用堿變性,而是在dNTP存在下,利用RNA酶H在雜交鏈的mRNA鏈上造成切口和缺口。從而產生一系列RNA引物,使之成為合成第二鏈的引物,在大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的作用下合成第二鏈。該反應有3個主要優點:(1)非常有效;(2)直接利用鏈反應產物,無須進一步處理和純化;(3)不必使用S1核酸酶來切割雙鏈cDNA中的單鏈發夾環。pcr檢測樣本的保存要求與方法?
PCR設計引物應遵循以下原則:①引物長度:15-30bp,常用為20bp左右。②引物擴增跨度:以200-500bp為宜,特定條件下可擴增長至10kb的片段。③引物堿基:G+C含量以40-60%為宜,G+C太少擴增效果不佳,G+C過多易出現非特異條帶。ATGC比較好隨機分布,避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。④避免引物內部出現二級結構,避免兩條引物間互補,特別是3'端的互補,否則會形成引物二聚體,產生非特異的擴增條帶。⑤引物3'端的堿基,特別是較末及倒數第二個堿基,應嚴格要求配對,以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。⑥引物中有或能加上合適的酶切位點,被擴增的靶序列比較好有適宜的酶切位點,這對酶切分析或分子克隆很有好處。⑦引物的特異性:引物應與核酸序列數據庫的其它序列無明顯同源性。引物量:每條引物的濃度0.1~1umol或10~100pmol,以比較低引物量產生所需要的結果為好,引物濃度偏高會引起錯配和非特異性擴增,且可增加引物之間形成二聚體的機會。細胞上清提取RNA進行PCR檢測。福建高質量pcr實驗室
RTpcr和pcr的區別是什么?浙江高質量pcr多少錢
PCR反應的比較大特點是具有較大擴增能力與極高的靈敏性,但令人頭疼的問題是易污染,極其微量的污染即可造成假陽性的產生。主要原因有:1、標本間交叉污染;2、PCR試劑的污染;3、PCR擴增產物污染;4、實驗室中克隆質粒的污染。一個好的實驗室,要時刻注意污染的監測,考慮有無污染是什么原因造成的污染,以便采取措施,防止和消除污染。1、陽性對照:在建立PCR反應實驗室及一般的檢驗單位都應設有PCR陽性對照,它是PCR反應是否成功、產物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標志。2、陰性對照:每次PCR實驗務必做陰性對照。它包括:(1)標本對照:被檢的標本是血清就用鑒定后的正常血清作對照;被檢的標本是組織細胞就用相應的組織細胞作對照。(2)試劑對照:在PCR試劑中不加模板DNA或RNA,進行PCR擴增,以監測試劑是否污染。3、重復性試驗。4、選擇不同區域的引物進行PCR擴增。浙江高質量pcr多少錢
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