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免疫組化的局限性，可能會有假陽性。陽性信號定位不正確即為假陽性，包括著色不勻、背景著色、邊緣效應，另外組織的某些特定成分也能導致假陽性結果。假陽性可能的原因有:(1)一抗濃度及一抗是否失效，抗體有一個合適的濃度范圍且必須在有效期內使用，過期的抗體或者不著色，或者背景著色，形成假陽性;(2)試劑未充分覆蓋組織，組織邊緣的試劑易干濃度較組織中間高致深染;(3)抗體孵育時間過長，由于室溫的影響夏季孵育時間稍短，冬季孵育時間稍長;(4)操作過程中組織變干，造成組織邊緣收縮或損壞形成偽影，產生假陽性;(5)3，3'-二氨基聯苯胺(DAB)顯色時間太長，DAB宜現配現用，配制時間比較好在30min以內;(6)由于胞漿里含有較多的蛋白質，因此間質和胞漿中出現很多非特異性的染色，如內源性酶血紅蛋白、肌紅蛋白等造成的著色，可以通過血清封閉解決;乳腺cancer組織中的脂肪細胞、淋巴細胞也會產生非特異性的染色;(7)非特異性抗體吸附常見于壞死組織中，使壞死組織呈較高的背景染色，在免疫組化中應避免選擇壞死組織較多的蠟塊。英瀚斯實驗外包，病理染色切片免疫組化，效率高！青海做得好的免疫組化推薦

實驗失敗常見問題分析有哪些：

為什么在顯微鏡下觀察發現所有的切片都成陰性？

答：這種現象主要是由操作不當導致，可能的原因有：1.染色操作不當，致使染色失敗；2.漏加一種抗體或者制備出的抗體沒有活性；3.緩沖液中有疊氮化鈉，抑制了酶的活性；4.復染或脫水劑使用不當等。建議逐一排查，找到原因后重新進行實驗。

在顯微鏡下觀察發現所有的切片都成陽性，這是為什么？答：與上一個問題類似，出現的原因也是試驗操作存在問題，可能的原因有：1.切片在染色過程中抗體過濃，或者干片了；使用的呈色底物溶液已變色或呈色反應時間過長；3.抗體溫育的時間過長等。

在顯微鏡下觀察發現切片的背景很深，這是為什么？答：以下幾方面會導致切片的背景過深：1.蛋白質封閉不夠或所用血清溶血，造成抗體的非特異性反應；2.內源性過氧化酶沒有完全阻斷，顯色過程中過氧化酶與酶底物反應，造成背景；3.底物呈色反應時間過長或呈色反應后漂洗不徹底。 四川免疫組化怎么樣有沒有做免疫組化比較好的公司？

免疫組化實驗注意事項總結：

?本實驗室所用切片一般是石蠟切片。

?烘片：使蠟片水分蒸發，石蠟軟化，組織切片牢固貼在玻片上；烘片至跟烘片前透明度有差異。

?抗原修復時，使片子始終浸沒在修復液中，液體不能干。

?一抗孵育在37度培養箱，濕盒放置1h，省時間和結合效果好，不要超過1h，容易過染。

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?二抗使用：兩個二抗放大信號或一個二抗；若抗體信號強，可不用放大信號，盡量增大信噪比。

?10XDAB在常溫溶解，盡可能現用現配，放于4度儲存時間久了效果不佳。

?復水和脫水時所用的梯度酒精不可混用，要區分開。

?加抗體和顯色液時，都要將片子甩干，在半干半濕的狀態下再加，不然容易造成溶液的二次稀釋。

?整個操作過程中在顯色之前，一定不能干片。

免疫組化的結果分析：

免疫組化實驗通常需要設置陽性對照、陰性對照（或替代對照）（陽性對照是排除方法和實驗系統有無問題；陰性對照與替代對照是排除有無非特異性染色）。一般情況下，陽性對照顏色的特點為：Ag定位，包漿、胞核、胞膜、間質具有結構性。且染色的強度不同（顏色深淺不一）；陰性對照的特點為：染色細胞與組織無區別，顏色具有彌散性，分布均勻。

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說明：免疫組化實驗可以對結果進行定量分析，但要實驗得到的必須是高質量的染色切片，要求背景染色淺且特異性染色較深，這樣分析的結果才會比較準確。 免疫組化可以看什么？

免疫組化臨床應用對“未分化”cancer的分類。未分化cancer包括cancer或肉瘤，在HE切片上由于cancer的“未分化”而缺少cancer細胞的起源特征不能分類，初步區分組織學類型用非特異性抗體，在其基礎上再選用特異性抗體做進一步鑒定。如分化差的cancer可顯示Vimentin或S-100蛋白，有時淋巴瘤可以表達上皮膜抗原，一些黑色素瘤表現出角蛋白，這同時也強調了在cancer診斷中應使用一組抗體而不是單個抗體。如果您有實驗外包的需求，可以與我們南京英瀚斯生物進行聯系，我們也有做免疫組化的服務！免疫組化如何得到好的效果？青海做得好的免疫組化推薦

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免疫組化結果背景染色較深的原因有哪些？

 （1）抗體濃度過高：一抗濃度過高是常見的原因之一。解決辦法是，每次使用新抗體前應當對其工作濃度進行測試，使每一抗體個體化，找到適合自己實驗室的理想工作濃度，既使是即用型的抗體也應如此，不能只簡單的按說明書進行染色。

（2）抗體孵育時間過長或溫度較高：解決辦法是，嚴格執行操作規程，比較好隨身佩帶報時表或報時鐘，及時提醒，避免因遺忘而造成時間延長。現在流行的二步法（Polymer）敏感性很高，要求一抗孵育的時間不是傳統的1小時，而是30分鐘，因此，要根據染色結果進行調整。 

（3）DAB變質和顯色時間太長：DAB比較好現用現配，如有沉渣應進行過濾后再用。配制好的DAB不應存放時間太長，因為在沒有酶的情況下，過氧化氫也會游離出氧原子與DAB產生反應而降低DAB的效力，未用完的DAB存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節約的辦法是不可取的。DAB的顯色比較好在顯微鏡下監控，達到理想的染色程度時立即終止反應。但是當染**太多時或用染色機時，這樣做似乎不現實，但至少應對一些新的或少用的抗體顯色時進行監控，避免顯色時間過長。

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